Western Blot 是检测混合样品中单一特定蛋白的常用实验技术。实验流程是先采用电泳将蛋白根据分子量大小在凝胶上进行分离，然后再转移到膜上，并用特定的抗体作为探针，对靶蛋白进行检测。其中转膜也称为转印，转印的方法有很多，包括电转印、微量过滤斑点印迹、扩散转印和毛细管转印。

通常电转印、扩散转印和毛细管转印用于电泳分离之后蛋白的转印，而微量过滤斑点印迹直接将均质溶液中的蛋白转到膜上。

扩散转印依赖于分子的热运动，使分子从高浓度区域转移到低浓度区域，转印效率低且大蛋白扩散转印十分困难。毛细管转印使用平板凝胶干燥系统或其他真空装置，将蛋白抽取到膜上，高真空容易粉碎凝胶和膜且凝胶放置时间长易变干，需要大量备用缓冲液。一般扩散转印和真空转印适合于定性实验，而Western Blot实验需要定量，因此电转印更适合于Western Blot实验，也是目前Z常用的转印方法，其转印速度快，转印效率高。

电转印原理：使用电场力驱动蛋白从凝胶中洗脱转移到膜上。此过程中，膜和凝胶放置在一起，并在两个电极之间放置滤纸。在电极之间施加电压，蛋白在电场力的作用下迁移到膜上。原理图如下：

电场强度（以V / cm为单位测量）决定转印的效率，理论上场强越高，转印越快；然而电场强度不是可以随意增加的，因为在电转印过程中会产生热量，焦耳热增加了温度并降低了转印缓冲液/三明治的电阻，电阻的这种变化可能导致电场强度和转印的不一致，或者可能导致转印缓冲液失去缓冲能力。因此实际试验中针对不同分子量的蛋白需要进行转印条件优化，以防止转印不足（蛋白不完全从凝胶中转移到膜上）或转印过度（蛋白穿透印迹膜造成损失）。

电转印根据转印设备和流程分为2种主要类型：湿转和半干转。

湿转：将凝胶和膜浸没在装满缓冲液的槽中进行蛋白电转移的过程；可实现大多数常规蛋白的高效、定量转印，且适合各种大小分子量范围的蛋白转印。湿转系统在选择电压设置、转印时间和冷却选项方面具有很大的灵活性。

半干转：凝胶和膜夹在缓冲液润湿的滤纸之间，滤纸与平板电极接触的转印方式；电极之间的距离仅受凝胶和膜夹层厚度的限制决定，这样就实现了高电场强度下的转印。通常半干转比湿转更容易操作，高通量，且转印时间短；同时这种方法可以使用不连续的缓冲体系。但半干转不能使用主动冷却方式进行温度控制，一些小蛋白可能会因高场强而被驱动穿过膜。此外，由于低缓冲容量限制了运行时间，一些大的蛋白可能转印效果不佳。快速半干转属于半干转的一种。

实验操作图（以半干转为例）如下：

湿转和半干转比较见下图：

全能型转印系统Trans-Blot Turbo优点如下：

快速转印-预设方案

3 min方案 — 在 3 分钟内完成 Mini-PROTEAN TGX 凝胶的超快速转印（蛋白分子量范围：5–150 kD）

7 min方案 — 在 7 分钟内高效转印 4块个小型或 2 块中型凝胶（蛋白质分子量范围：5–150 kD）

10 min方案 — 在 10 分钟内高效转印 4块小型或 2 块中型凝胶（蛋白质分子量范围：25–300 kD）

超高转印效率

与其他印迹技术相比较，使用 Trans-Blot Turb 系统可获得更高的转印效率。下图显示 Trans-Blot Turbo 系统成功转印 1.25 ng 蛋白条带。

高通量，模块化设计

高通量：可以同时转印4块小型胶或者2块中型胶。

模块化：转印装配模块与主机独立设计，组合运用。